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ICC染色結(jié)果分析

  ICC染色結(jié)果判斷與其它組織化學相似,應在熟悉所應用方法、抗體的優(yōu)點和局限性的基礎上,避免主觀意識,進行客觀判斷。一般認為在嚴格操作、控制染色的條件,選擇特異性抗體等條件下,所得結(jié)果是陽性時才有積極意義。而陰性時,不一定意味著該物質(zhì)或抗原不存在,即不能排除實驗過程所致的抗原丟失或抗體選擇不當?shù)纫鹑斯ぜ傧。另外根?jù)ICC染色強弱做半定量分析時,必須是同時固定、相同的組織塊、相鄰/同一切片,在嚴格控制抗體用量和顯色時間等條件下,進行圖象測定,否則無法相互比較。鏡檢時,首先從對照標本開始,判斷固定是否合適、非特異性著色強弱等再從低倍至高倍順序觀察實驗標本,預期陽性部位是否被染色,不該含此類物質(zhì)的部位是否陰性等。一般認為,切片邊緣的較強染色,屬于非特異性著色,所以應避免作為陽性結(jié)果的依據(jù)。同時應結(jié)合對照實驗、鑒別假陽性,以便做出正確判斷。

  一、對照實驗

  1.吸收實驗  應用尚無文獻報告的抗血清/自己制備的抗血清進行ICC染色時,需用相應的抗原吸收抗血清后,再孵育標本,判斷結(jié)果的可信性(結(jié)果應為陰性)。常用的吸收實驗分固相吸收和液相吸收兩種(見本書第一章 ),對于不能形成沉淀,難以用離心沉降法分離的一些小分子多肽類抗原,以固相吸收為佳。一般市售抗體均經(jīng)特異性檢測,所以應用購買抗體時可省略此步。

  2.交叉實驗  我們知道,引起機體免疫應答反應的并非是免疫原整個分子,而是其中的一部份—抗原決定簇。每個抗原可能有不同的抗原決定簇,不同的抗原亦可能有類似的抗原決定簇,因此一種抗血清可能與幾種抗原結(jié)合。所以同時最好亦用結(jié)構相近的抗原做吸收實驗,以避免抗原間的交叉反應。

  3.替代實驗  用制備第一抗體相同種屬的正常血清(1/10或相同IgG濃度)替代第一抗體或用第二抗體相同種屬的正常血清替代酶標抗體/橋抗體或省略其中任何一種免疫試劑或酶等,以PBS代替之,分別孵育切片,結(jié)果均應為陰性。

  4.置換實驗  應用無關的特異性抗體代替第一抗體,孵育切片,結(jié)果應陰性。如果同時進行幾種特異性抗體的ICC染色時,彼此之間即為此類對照。例如,無關的數(shù)種抗體,均在相同部位出現(xiàn)類似陽性結(jié)果時,非特異性著色的可能性較大,應慎重判斷。

  5.陽性對照  不具有ICC染色經(jīng)驗者,從事此項工作時,最好同時染色已知陽性標本,以排除操作過程失誤所致的染色陰性。陽性標本切片最好冰凍保存?zhèn)溆谩?/P>

  另外,在觀察新的組織抗原時,最好同時比較不同的固定的組織標本、冰凍切處及石蠟切片的ICC染色,選擇最佳條件,以期得到良好的實驗結(jié)果。

  二、假陽性及其處理

  組織成分與各種染色試劑及抗血清之間的非特異性結(jié)合稱假陽性,其主要原因和處理方法如下:

  1.組織細胞內(nèi)色素  與DAB沉淀物顏色類似的色素,例如黑質(zhì)內(nèi)的神經(jīng)黑色素,不易與反應產(chǎn)物區(qū)別開來?捎闷渌娮庸w或免疫熒光技術鑒別之,亦可改用ALP代替HRP,進行染色。醫(yī).學.全.在.線.網(wǎng).站.提供

  2.假過氧化物酶活性  RBC內(nèi)的血紅素輔基有類過氧化物酶活性,當組織內(nèi)存在紅細胞時,即使不加過氧化酶,亦可出現(xiàn)陽性染色。用甲醇-0.3%H2O2孵育標本15~20min(室溫),能抑制這種假陽性。甲醇可以使血紅素蛋白中的(亞鐵)血紅素游離,后者被H2O2破壞,從而抑制類過氧化物酶的活性。一般認為,RBC的染色容易同其它組織細胞區(qū)別,且動物實驗還可通過灌注沖洗組織內(nèi)的RBC,所以此步往往被省略。

  3.內(nèi)源性過氧化物酶活性  粒細胞、巨噬細胞等存在內(nèi)源性過氧化物酶,能夠與DAB-H2O2反應,導致假陽性,所以含此類細胞較豐富的脾臟、肝臟、骨髓等組織,ICC染色時,最好做內(nèi)源性酶阻斷。適當?shù)墓潭、?jīng)酸酒精孵育15~20min,或1%乙酸-甲醇硝基鐵氰化物處理,冰凍切片可用苯肼孵育15~20min,均能不同程度地抑制內(nèi)源性酶的活性。近年Li(1987)報告,應用0.1%NaN3 0.3%-- H2O2孵10~15min(室溫)能較好地抑制內(nèi)源性過氧化物酶的活性,冰凍切片效果尤佳。嗜酸性粒細胞內(nèi)源性過氧化物酶活性較強,上述各種處理后,仍殘留部分活性,此種情況,在DAB-H2O2顯色液中加入終濃度為0.05NaN3,基本上可達到完全阻斷的作用。但是,各種封閉內(nèi)源性(假)過氧化物酶方法均不同程度地破壞組織的抗原性,所以在不影響反應結(jié)果判斷或能夠同內(nèi)源性酶的反應所致的假陽性區(qū)別時,盡量避免此類處理或改用ALP代替HRP進行ICC染色,也可以在用第一抗體與抗原反應結(jié)合后,再進行消除內(nèi)源酶的處理。

  4.游離醛基  醛類固定的組織切片上,可能存在些游離醛基,后者能與蛋白質(zhì)(含IgG)間非特異性結(jié)合,導致假陽性,用白蛋白或封閉性阻斷等預先孵育切片,可封閉之。

  5.疏水鍵和離子鍵  免疫球蛋白可通過疏水鍵或離子鍵與組織中的堿性蛋白或Fc受體(冰凍切片F(xiàn)c受體保存尤佳)非特異性結(jié)合。用正常血清(制備第二抗體種屬的血清為首選),于第一抗體前孵育切片,可消除之!4”和“5”重疊應用,更有利于降低背景染色。

  6.天然抗體及不純抗體  天然抗體是指因動物自然感染等原因血清中存在的部分抗體:不純抗體是指在制備血清時,所用的抗原不純,獲得的抗體含有雜質(zhì)抗體。當天然抗體或不純抗體與組織成分結(jié)合時,可引起非特異性染色。上述二者的含量均較低,增加第一抗體的稀釋度,可以降低其非特異性染色。

  7.載體蛋白抗體  制備小分子多肽(分子量小于4kD)的抗體時,需借助載體蛋白,使小分子多肽獲得免疫原性,刺激動物產(chǎn)生特異性抗體。因載體本身具有抗原性,故動物同時也產(chǎn)生抗載體蛋白抗體,與組織蛋白結(jié)合后,引起背景染色。用固相吸收技術,能將載體蛋白抗體除去。一般市售抗體,均經(jīng)特異性檢測,所以“6”和“7”可不必考慮。

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