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營養(yǎng)與食品衛(wèi)生-實(shí)驗(yàn)指導(dǎo):實(shí)習(xí)六 食物及負(fù)荷尿中核黃素的測定

營養(yǎng)與食品衛(wèi)生:實(shí)驗(yàn)指導(dǎo) 實(shí)習(xí)六 食物及負(fù)荷尿中核黃素的測定:實(shí)習(xí)六、食物及負(fù)荷尿中核黃素的測定一、熒光法測定食物中的核黃素(一)目的意義 核黃素是機(jī)體的物質(zhì)代謝和能量代謝中不可缺少的物質(zhì)。通過測定食物中核黃素含量,可了解人體核黃素?cái)z人情況。 (二)原理 核黃素受到波長為440~500nm的光照射后能產(chǎn)生光黃素,此物質(zhì)能產(chǎn)生較強(qiáng)的熒光。在稀溶液中其熒光強(qiáng)度與核黃素濃度呈正比。 試液中再加入低亞硫酸鈉(Na2S204),將核黃素還原為無熒光物質(zhì),然后再測定試液

實(shí)習(xí)六、食物及負(fù)荷尿中核黃素的測定

一、熒光法測定食物中的核黃素

 (一)目的意義

核黃素是機(jī)體的物質(zhì)代謝和能量代謝中不可缺少的物質(zhì)。通過測定食物中核黃素含量,可了解人體核黃素?cái)z人情況。

  (二)原理

核黃素受到波長為440~500nm的光照射后能產(chǎn)生光黃素,此物質(zhì)能產(chǎn)生較強(qiáng)的熒光。在稀溶液中其熒光強(qiáng)度與核黃素濃度呈正比。

試液中再加入低亞硫酸鈉(Na2S204),將核黃素還原為無熒光物質(zhì),然后再測定試液中殘余熒光物質(zhì)的熒光強(qiáng)度,兩者之差即為食品中核黃素所產(chǎn)生的熒光強(qiáng)度。

(三)儀器和試劑 &nbbhskgw.cn/wszg/sp;

 1.熒光光度計(jì)。圖2核黃素吸附柱 Ib=內(nèi)徑寬度

2.高壓消毒鍋

3.錐形燒瓶、核黃素吸附柱(圖2)。

4. 1.0 mol/L鹽酸溶液  吸取分析純濃鹽酸83.3ml于1L容量瓶,加蒸餾水稀釋至刻度。

5. 0.1mol/L鹽酸溶液  吸上液100ml稀釋至1L。

6. 4%氫氧化鈉溶液,0.4%氫氧化鈉溶液。

7. 3%高錳酸鉀溶液。

8. 3%過氧化氫溶液。

9.核黃素儲備液(25 μg/ml)  精確稱取已干燥過的核黃素(在干燥器內(nèi)放置24h) 25mg,加少量蒸餾水溶解后倒入1L容量瓶,加蒸餾水500ml,加入2.4ml冰醋酸,將其放在溫水中搖動使顆粒完全溶解,冷卻后稀釋至刻度,加入少量甲苯,避光冷藏備用。

10.核黃素工作液(0.lyg/ml)  吸取上液10.Oml加水稀釋至250ml。避光,貯于4℃冰箱中可保存1周。

11. 20%低亞硫酸鈉溶液。用時(shí)現(xiàn)配,保存在冰水浴中,4h內(nèi)有效。

12. 0.04%溴甲酚綠指示劑  稱取O.lg溴甲酚綠于小研缽中,加1.4ml 0-4%

氫氧化鈉溶液研磨,加少許水,繼續(xù)研磨直至完全溶解,加水稀釋至250ml。

13.  2.5mol/L無水乙酸鈉溶液,使用時(shí)配制。

14.  10%木瓜蛋白酶2.5mol/L乙酸鈉溶液,使用時(shí)配制。

15.  10%淀粉酶2.5mol/L乙酸鈉溶液,使用時(shí)配制。

16.洗脫液  丙酮:冰乙酸:水(5:2:9)。

    (四)操作步驟

整個(gè)操作過程需避光進(jìn)行。

1.樣品前處理  稱取2~10g樣品(約含10~200μg核黃素)于100ml錐形瓶中,加入50ml 0.1 mol/L鹽酸,攪拌到樣品顆粒分散均勻,置于高壓鍋內(nèi),在6.8kg(15磅)高壓下水解樣品30min。水解液冷卻后,加入4%氫氧化鈉調(diào)pH至4.5(取少許水解液用0.04%溴甲酚綠檢驗(yàn)呈草綠色pH為4.5)。

  2.酶解。

  (1)含有淀粉的水解酶加入3ml10%淀粉酶溶液,于37~40℃保溫約16h。

  (2)含高蛋白的水解液加3ml10%木瓜蛋白酶溶液,于37~40℃保溫約16h。

  上述酶解液用水定容后至100ml,過濾。濾液在4℃冰箱可保存1周。

  3.氧化去雜質(zhì)  取試管2支分別編號為A和B,按表3順序操作。

表3  氧化去雜質(zhì)操作

管號

A

B

濾液

10.0

-

核黃素工作液

-

1.0

蒸餾水

1.0

-

醫(yī)學(xué).全在線bhskgw.cn冰醋酸

1.0

1.0

混勻

3%高錳酸鉀液

0.5

0.5

混勻后放置2min以氧化樣品中雜質(zhì)與色素,再滴加3%過氧化氫至溶液褪色,以還原高錳酸鉀。劇烈搖動試管,使多余氧氣逸出。

4.核黃素的吸附和洗脫  吸附柱下端用一小團(tuán)脫脂棉墊上,然后稱取lg硅鎂吸附劑用濕法裝入柱子(約5cm高)。勿使柱內(nèi)產(chǎn)生氣泡,調(diào)節(jié)流速為60滴/分鐘左右。將A管和B管內(nèi)的氧化后液體通過吸附柱后,用約20ml熱水洗脫樣液中的雜質(zhì),再用5.Oml洗脫液將核黃素洗脫并收集于一帶蓋試管中,再用水洗吸附柱,收集洗出的液體并定容至10ml,混勻后待測熒光強(qiáng)度。

5.測定熒光強(qiáng)度選擇激發(fā)波長為420nm,發(fā)射波長為520nm,測量樣品管及標(biāo)準(zhǔn)管的熒光強(qiáng)度。然后,在各管的剩余液中加0.1ml20%低亞硫酸鈉溶液,立即混勻,在20s內(nèi)測出各管的熒光值,作為各自的空白值。

(五)計(jì)算

樣品中核黃素量

式中A:樣品管熒光值;

B:樣品管空白熒光值;

C:標(biāo)準(zhǔn)管熒光值; ‘

D:標(biāo)準(zhǔn)管空白熒光值;

F:稀釋倍數(shù);

 W:樣品重量g;

    S:標(biāo)準(zhǔn)管中核黃素含量μg。

  (六).說明

  1.加入低壓硫酸鈉量不能過多以免影響熒光強(qiáng)度,加入后必須立即讀數(shù),否則核黃素又會被空氣氧化為熒光型。

2.過氧化氫不宜多加,因會產(chǎn)生氣泡而影響比色。

3.如加入高錳酸鉀后有氧化錳細(xì)微褐色溶液混濁,可離心使之澄清。

4.不能用皂粉洗滌玻璃器材,應(yīng)用硫酸-重鉻酸鉀洗液浸洗,再以清水洗凈。

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